實驗原理

利用低濃度去垢劑選擇性裂解細胞膜，同時保持核膜完整，然后通過差速離心進行分離。

1.選擇性裂解：

使用含有低濃度非離子去垢劑的等滲緩沖液。這種濃度足以溶解細胞膜和胞漿膜結構，但無法破壞結構更堅固的核膜。

2.差速離心：

通過控制離心力，可以初步將細胞核（沉淀）與胞漿成分（上清）分離開。

1）低速離心：完整的細胞核是細胞中最大最重的細胞器，在較低轉速下（500-1,000g）即可沉淀。

2）高速離心：胞漿蛋白、細胞器（線粒體、微粒體等）需要更高的轉速（10,000g以上）才能沉淀。

操作步驟

第一步：細胞收集與洗滌：

1）吸棄培養皿中的培養基；

2）用預冷的PBS輕柔地洗滌細胞2次，充分洗去殘留的血清（血清中含蛋白酶）；

3）充分吸盡PBS。

Tip：使用胰酶處理貼壁細胞時要嚴格注意消化時間；胰酶會使細胞變得很脆弱，影響后續核質分離；不同細胞種類其核質分離結果略有所不同。

圖片中左側為細胞數量是2×10⁶個數的CHO-S細胞（黃色細胞沉淀）；圖片右側為細胞數量1×10⁵個數的Raw（白色細胞沉淀），作為反面對照，細胞個頭較小，數量太少，對后續提出的蛋白濃度以及核漿分離結果有較大的影響。

第二步：細胞裂解：

1）加入一定量的裂解液裂解細胞；

2）渦旋振蕩10-15秒（或劇烈吹打），以充分裂解細胞。此時應觀察到液體變得非常粘稠（因DNA釋放）；

3）冰上孵育10-15分鐘。此時，細胞會因裂解而變得粘稠，透亮。

Tip：2×10⁶個細胞體積通常為20μL，需要使用細胞計數儀檢測密度后，再取2×10⁶個細胞進行后續實驗。

第三步：離心分離：

1）在4°C, 1000g離心5-10分鐘；

2）離心后，溶液分為兩層：

A.上面一層是上清(Supernatant)：即為胞漿蛋白提取物；小心將其轉移到一個新的預冷離心管中，二次離心，確保細胞漿蛋白的干凈無污染。

B.下面的沉淀(Pellet)：包含完整的細胞核以及未破碎的完整細胞、細胞骨架等，等待后續細胞核蛋白的裂解。

第四步：洗滌細胞核（關鍵純化步驟）：

1）向沉淀中加入適量預冷的細胞漿裂解緩沖液；用移液器非常輕柔地重懸沉淀；

2）再次在4°C,1000 g離心5分鐘；

3）小心吸棄上清；此時得到的沉淀是較純的細胞核。

Tip：吸頭切勿觸及細胞沉淀，為降低胞漿組分對細胞核組分的污染，可以在沉淀上方保留極小體積的上清，換用10 μL的吸頭盡可能吸盡，必要時可將極小體積上清棄掉。

第五步：核蛋白提取

1）向洗凈的細胞核沉淀中加入適量的預冷細胞核裂解緩沖液；

2）在4°C下，通過渦旋或輕柔吹打重懸沉淀，并在搖床上孵育40分鐘，使核膜裂解，核蛋白充分釋放；

3）在4°C 13000g 離心10分鐘。小心吸取上清，即為核蛋白提取物；將胞漿蛋白和核蛋白分裝后，于-80°C保存。

Tip：為保證提取的核蛋白干凈無污染，吸取時，可以在沉淀上方棄掉小部分上清。

提取蛋白時，出現的相關問題

1、核質分離不充分，出現交叉污染：

2、核蛋白提取效率低：

3、其他問題：

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