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Western Blot實驗中濾紙和膜的選擇 應用 用法

更新時間:2012-02-01  |  點擊率:22667

 

Western Blot實驗中濾紙及膜的選擇
      
Western Blot實驗中濾紙及膜的選擇
Western Blot實驗中濾紙使用的濾紙必須是 WHATMAN  3MM層析濾紙WHATMAN 3MM濾紙

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1、NC膜、PVDF膜、尼龍膜怎樣鑒別?
解答:尼龍膜是較理想的核酸固相支持物,有多種類型;*纖維素(NC)膜是目前應用廣的一種固相支持物,價格便宜;PVDF膜介于二者之間。
就結合能力而言:尼龍膜結合DNA和RNA能力可達480-600μg/cm2,可結合短至10bp的核酸片段;*纖維素膜結合DNA和RNA能力可達80-100μg/cm2,對于200bp的核酸片段結合能力不強;PVDF膜結合DNA和RNA能力可達125-300μg/cm2。
就溫度適應性而言:尼龍膜經烘烤或紫外線照射后,核酸中的部分嘧啶堿基可與膜上的正電荷結合;*纖維素膜依靠疏水性相互作用結合DNA,結合不牢固;PVDF膜結合牢固,耐高溫,特別適合于蛋白印跡。
就韌性而言:尼龍膜較強;*纖維素膜較脆,易破碎;PVDF膜較強。
就重復性而言:尼龍膜可反復用于分子雜交,雜交后探針分子可經堿變性被洗脫下來;*纖維素膜不能重復使用;PVDF膜可以重復使用。
2、在做Western Blot時,PVDF膜用甲醇浸泡的目的?
解答:PVDF膜用甲醇泡的目的是為了活化PVDF膜上面的正電基團,使它更容易跟帶負電的蛋白質結合,做小分子的蛋白轉移時多加甲醇也是這個目的。
3、檢測磷酸化的JNK 和非磷酸化的JNK可以在同一張膜上嗎?
解答:可以。
4、轉膜后經麗春紅染色的條帶,為什么大分子蛋白的一端(即點樣的一側)的轉膜不是很好?
解答:這是正常的,大分子的蛋白轉移的慢,延長轉移時間和電流,大分子一端就會好的多,但是小分子的就有可能會變淡。
5、膜一般要如何處理?
解答:一般用甲醇泡泡就可以了。
6、上下槽緩沖液有何要求,怎樣才能達到佳效果。
解答:無要求。
7、跑電泳的時候配的膠總是“縮”是什么原因呢?是有的成分不對嗎?
解答:沒什么問題,就是膠里的水分被蒸發了。過夜時拿保鮮膜包起來,在里面加點水保持濕度就可以了。如果過夜,膠里的水分被蒸發,采用保鮮膜包上也可以;也可能母液(30%聚丙酰胺)有問題,可以重新配制一份觀察;能夠替換的試劑,盡量換一下,選用好的試劑,避免找麻煩。脫色液中甲醇的含量太高也會造成膠縮。
8、膜、濾紙、膠大小有何講究?
解答:如果是用的是半干轉,順序為:陰極-濾紙-膠-膜-濾紙。濾紙的長寬比膠的長寬小1-2mm,而膜的長寬分別比膠的長寬大1-2mm。禁忌:上下兩層濾紙因為過大而相互接觸,這樣會短路,電流不會通過膠和濾紙。
9、蛋白質的分子量跨度很大,如要分離小21KD,中至66KD,大至170KD,可以一次做好嗎?
解答:這么廣的分布不好轉移,一般建議:21kd和66kd可以一起轉,12%SDS-PAGE,濕轉36V,3-5hrs就可以了, 可以根據實驗室的經驗調節;170kd 用7%SDS-PAGE, 48V 10hrs-16hrs。
10、不能很好地將大分子量蛋白轉移到膜上,轉移效率低怎么樣解決?
解答:可以考慮:轉移緩沖液中加入20%甲醇(是指終濃度)(優化的轉移緩沖液,可以參考《蛋白質技術手冊》),因為甲醇可降低蛋白質洗脫效率,但可增加蛋白質和NC膜的結合能力,甲醇可以防止凝膠變形,甲醇對高分子量蛋白質可延長轉移時間;轉移緩沖液加入終濃度0.1%SDS,也是為了增加轉移效率;用的轉移膜,或使用小孔徑的NC膜(0.2微米);使用戊二醛交聯;低濃度膠,如低至6%。太大時還可以考慮用瓊脂糖膠;提高轉移電壓/電流;增加轉移時間。
11、如何選擇合適的蛋白雜交膜?
解答:蛋白質印跡雜交是分子生物學實驗中極為常用的一門技術。選擇質量上層、合乎要求、方便適用的雜交膜是決定這項實驗成敗的重要環節。根據雜交方案、被轉移生物大分子的特性以及分子大小等等因素,我們要量體裁衣,從雜交膜的材質、孔徑和規格上都要做出合理的選擇。
*纖維素膜:*纖維素膜是蛋白印跡實驗的標準固相支持物。在低離子轉移緩沖液的環境下,大多數帶負電荷的蛋白質會與*纖維素膜發生疏水作用而高親和力的結合在一起,雖然這其中的機制還不是十分清楚,但由于*纖維素膜的這個特性,而且易于封閉非特異性結合,從而得到了廣泛的應用。在非離子型的去污劑作用下,結合的蛋白還可以被洗脫下來。根據被轉移的蛋白分子量大小,要選擇不同孔徑的*纖維素膜。因為隨著膜孔徑的不斷減小,膜對低分子量蛋白的結合就越牢固。但是膜孔徑如果小于0.1μm,蛋白的轉移就很難進行了。因此,我們通常用0.45μm和0.2μm兩種規格的*纖維素膜。大于20kD的蛋白就可以用0.45μm的膜,小于20kD的蛋白就要用0.2μm的膜了,如果用0.45μm的膜就會發生“Blowthroμgh”的現象。從膜的質地上來看,重要的指標就是單位面積上能夠結合的蛋白的量。*纖維素膜的結合能力主要與膜的*纖維素的純度有關,市場上有些*纖維素膜通常會有大量的醋酸纖維素,因而降低了蛋白的結合量。S&S公司采用的是100%純度的*纖維素,保證了大的蛋白結合量,可達80-150μg/cm2。由于100%的純度,因而也大大減少了非特異性的結合,降低雜交背景,無需高嚴謹度的洗脫步驟。其次,膜的強度和韌性也是需要考慮的因素。常規的*纖維素膜比較脆,漂洗一兩次就會破損,不能反復使用。
PVDF轉移膜:PVDF是一種高強度、耐腐蝕的物質,通常是用來制造水管的。PVDF膜可以結合蛋白質,而且可以分離小片段的蛋白質,初是將它用于蛋白質的序列測定,因為*纖維素膜在Edman試劑中會降解,所以就尋找了PVDF作為替代品,雖然PVDF膜結合蛋白的效率沒有*纖維素膜高,但由于它的穩定、耐腐蝕使它成為蛋白測序理想的用品,一直沿用至今。PVDF膜與*纖維素膜一樣,可以進行各種染色和化學發光檢測,也有很廣的適用范圍。這種PVDF膜,靈敏度、分辨率和蛋白親和力在精細工藝下比常規的膜都要高,非常適合于低分子量蛋白的檢測。但PVDF膜在使用之前必需用純甲醇進行浸泡飽和1-5秒鐘。
離子交換型轉移膜:*纖維素和PVDF膜是靠疏水作用結合蛋白的,還有一類膜是根據離子交換的方式結合生物大分子的。由DEAE(二乙氨乙基)修飾的纖維素制成的DEAE陰離子交換膜同樣可以 作為蛋白質印跡的固相支持物。DEAE可以有效的結合陰離子基團,包括那些高于其等電點的蛋白質。在pH10以下,DEAE基團都能帶電荷,在低離子強度的轉移液中結合蛋白分子。其適的pH環境為5-7。DEAE膜可以用于蛋白多糖、病毒、酶以及血紅蛋白的研究。這種0.45μm孔徑的DEAE膜,除了可以做Western Blotting外,還可以用于核酸結合研究。
還有一種離子交換型膜是羧甲基(CM)修飾的纖維素膜,它可以結合蛋白和多肽分子,以及其他的一些帶正電荷的樣品,適結合pH范圍在4-7。結合的多肽分子可以從CM膜上洗脫下來,用于氨基酸系列分析或微測序。
雜交膜轉印膜*纖維素膜NC與PVDF膜的區別
      雜交膜轉印膜*纖維素膜NC與PVDF膜的區別
1. *纖維素膜
*纖維素膜是蛋白印跡廣泛使用的轉移介質,對蛋白有很強的結合能力,而且適用于各種顯色方法,包括同位素,化學發光(Luminol類)、常規顯色、染色熒光顯色;背景低,信噪比高。NC的使用也很簡便,比如不需要甲醛預處理,只要在無離子水面浸潤排出膜內氣泡,再在電泳緩沖液中平衡幾分鐘就可以了;比如NC很容易封閉,也不需要特別嚴謹的清洗條件。轉移到NC上的蛋白在合適的條件下可以穩定保存很長時間,不過要注意的是純的硝纖膜在比較脆,又容易卷,操作要小心,不適合用于需要多次重復清洗的用途--因為經不起多次“折磨”。選擇硝纖膜時要注意的是選擇合適的孔徑,通常20KD以上的大分子蛋白用0.45um孔徑的膜,小于20KD的話建議選擇0.2um的,如果小于7KD的話好選擇0.1um的膜。另外還要注意選擇純的NC--混有含醋酸纖維(CM)的NC結合力會有所降低。另外提醒一句:由于NC上結合的蛋白會因為一些去污劑而被代替,因此在封閉時好使用較溫的Tween20,而且濃度不要超過0.3%(據說0.05%效果好)。一般而言,NC越純,其蛋白結合能力就越高,所以要增加WB的靈敏度分辨率,提高所使用膜的純度是個可以考慮的選擇。如果NC攙雜一些醋化纖維素--這在前面已經提到,會影響蛋白質結合。Protran由于是純NC,比較脆,機械耐受力欠佳,需要小心操作,如果擔心自己“粗手粗腳”,那么就可以考慮一下Optitran或者Pall公司的以耐受力著稱的BioTrace NT Nitrocellulose Transfer Membrane。卷膜肯定是實惠的選擇,只不過要自己動手裁剪--切記,必須帶手套操作。
*纖維素膜生產商:
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GE RPN303C
PALL 66485 常用的NC膜 30cm*3m/卷超低*:1250.00/卷現貨
 
2. PVDF
與*纖維素膜相比,PVDF膜在蛋白質截留能力,機械強度化學相容性上都更*的性能。市售*纖維素膜的典型結合量是80-100μg/cm2,而PVDF膜結合量是100-200μg/cm2(而結合強度PVDF比硝纖膜強6倍!)。但是PVDF膜大的優點不僅于此:更好的機械強度化學耐受性使PVDF膜在各種染色應用多重免疫檢測中成為理想選擇;而且單個凝膠的泳道復本可用于多種目的,特別是需要做N端蛋白測序,在相當“嚴酷”的清洗條件下,當尼龍或者硝纖膜已經降解的情況下PVDF膜依然保持本色,笑傲江湖。所以PVDF也是要做蛋白測序的*選擇。但不適合熒光。PVDF膜特別注意的是需要100%甲醇預處理(不超過15秒)再用緩沖液平衡,才能用,而且適用過程中萬一干了也要同樣程序再處理(不過要真出現這種問題也是自己欠扁,誰要你不小心呢,轉膜前處理也就罷了,轉膜后再這樣處理可能會影響后繼的抗體識別呢)。PVDF膜同樣分0.45um0.2um的,后者孔徑小,對小分子蛋白有較好的攔截吸附,背景可能會比前者稍高。
pvdf膜生產商:
MILLIPORE * 常年 現貨
IPVH00010  0.45um  1650.00/卷
ISEQ00010  0.22um   2050.00/卷
 
PALL 66543      2150.00/卷
 
卷膜經濟實惠,裁剪剩下的邊角料還可以用來做點雜交。再次強調的是,疏水PVDF膜在用前必須經過50%或以上體積比的甲醇或者乙醇溶液處理幾分鐘,待膜變成半透明后用純水漂洗一下,轉入電泳緩沖液平衡才能用

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